Article Sidebar

Download
PDF
Statistic
Read Counter : 323 Download : 91

Downloads

Download data is not yet available.

Main Article Content

Abstract

This study evaluated the age, growth, and reproduction traits of Pontinus sierra, captured by the artisanal longline fleet in the Las Piñas Fishing Cove, Manabí, Ecuador, from May 2018 to April 2019, with an analysis of 253 specimens. Samples were transported to the biology laboratory of the Faculty of Marine Sciences at the Universidad Laica Eloy Alfaro de Manabí, where the corresponding morphometric analyses were conducted. The length-weight relationship was established (W=0.02TL2.69), indicating negative allometric growth. Otolith analysis identified up to 16 age groups and was consistent among the three readers, APE=1.70, CV=5.64. Bayesian multimodel analysis selected the von Bertalanffy model as the best fit (Looic=639.40), with growth parameters L∞=43.44cm TL, k=0.10. The mean size and age at sexual maturity were 22.64cm LT and 7.41, respectively. Reproductive dynamics, evaluated using the Gonadosomatic Index (GSI), showed reproductive activity and significant differences throughout the study period (K-W=89.01 P<0.05). P. sierra exhibited moderately slow growth, being a long-lived species with continuous reproduction. These findings provide crucial information for the sustainable management of this important fishing resource in the region.

Keywords

Age Growth Reproduction Otolith

Article Details

License
Creative Commons License

This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.

The authors transfer the copyrights of their papers to the Iranian Society of Ichthyology. However, the information could be used in accordance with the Creative Commons licence (Attribution-NonCommercial 4.0 International (CC BY-NC 4.0)

How to Cite
RAMÍREZ-ORMAZA, N., TEJENA-CEVALLOS, S., MENDOZA-NIETO, K., ALIÓ, J., & BRIONES-MENDOZA, J. (2024). Age, growth, and reproduction traits of <i>Pontinus sierra</i>, captured by the artisanal fisheries in Ecuador. Iranian Journal of Ichthyology, 11(1), 17–27. https://doi.org/10.22034/iji.v11i1.1017
Download Citation
Endnote/Zotero/Mendeley (RIS)
BibTeX

References

  1. Abellán, L.J.L.; Santamaría, M.T.G. & Conesa, P. 2001. Age and growth of Pontinus kuhlii (Bowdich, 1825) in the Canary Islands. Scientia Marina 65(4): 259-267.
  2. Ba, A.; Diouf, K.; Guilhaumon, F. & Panfili, J. 2015. Slow growth of the overexploited milk shark Rhizoprionodon acutus affects its sustainability in West Africa. Journal of Fish Biology 87: 912-929.
  3. Barboza, M.G. 2019. Biologia reprodutiva do Pontinus nigropunctatus (Teleostei: Scorpaenidae), no arquipélago de São Pedro e São Paulo. [Bachelor thesis, Universidade Federal Rural de Pernambuco, Recife, Brazil].
  4. Beamish, R. & Fournier, D. 1981. A Method for Comparing the Precision of a Set of Age Determinations. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences 38(8): 982-983.
  5. Casselman, J.M. 1983. Age and growth assessment of fish from their calcified structures—Techniques and tools. NOAA Technical Report NMFS, 8: 1-17.
  6. Castillo Alva, J.E. 2012. Determinación de la proporción sexual y su relación con la hora pico de desove de la anchoveta Engraulis ringes (Jenyns, 1842) durante el periodo 2000-2009 en la región norte-centro del Perú. [PhD thesis, Universidad Nacional Mayor de San Marcos, Peru.
  7. Chang, W.Y. 1982. A Statistical Method for Evaluating the Reproducibility of Age Determination. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences 39(8): 1208-1210.
  8. Chura, R.; Ninaraqui L.H. & Godoy S.S. 2021. Ciclo reproductivo y principal periodo de reproducción del “carachi gris” Orestias agassizii (Valenciennes, 1846) en el Lago Titicaca (2008-2017). Informe Instituto del Mar del Perú 48(3): 380-387.
  9. Duarte, L.O.; Gómez-Canchong, P.; Manjarrés, L.M.; García, C.B.; Escobar, F.D.; Altamar, J.; Viaña, J.E; Tejada, K.; Sánchez, J. & Cuello, F. 2006. Variabilidad circadiana de la tasa de captura y la estructura de tallas en camarones e ictiofauna acompañante en la pesquería de arrastre del Mar Caribe de Colombia. Investigaciones Marinas 34(1): 23-42.
  10. Estácio, S.; Mendonca, A.; Kruh, H.; Menezes, G.M. & Pinho, M.R. 2001. Aspects of the reproduction of six exploited demersal fish species in the Azores Archipelago. Arquipélago. Life and Marine Sciences. Supplement 2 (Part B): 83-94.
  11. FAO/PNUMA. 1984. Conservación de los recursos genéticos de los peces: Problemas y recomendaciones. FAO Doc. Téc. Pesca. 217/42, FAO, Rome.
  12. Fischer, W.; Krupp, F.; Schneider, W.; Sommer, C. & Carpenter, K.E. 1995. Guía FAO para la identificación de especies para los fines de la pesca: Pacífico centro-oriental. Volúmenes 1-3. FAO, Rome.
  13. Franco-Fuentes, E.; Moity, N. ; Ramírez-González, J.; Andrade-Vera, S.; Hardisson, A.; Rubio, C.; Paz, S.; González-Weller, D.; Rubio, C. & Gutiérrez, Á.J. 2023. Analysis of metals and metalloid in commercial fish species from the Galapagos Marine Reserve: Toxicological and nutritional assessment. Marine Pollution Bulletin 189: 114739.
  14. Froese, R. 2006. Cube law, condition factor and weight–length relationships: History, meta-analysis and recommendations. Journal of Applied Ichthyology 22(4): 241-253.
  15. Froese, R. & Pauly, D. 1999. FishBase 99: Concepts, structure and sources of data. ICLARM, Manila.
  16. Garcia, M.; Gilces, I.; Lavayen, F.; Daza, C.; Bermudez, C.; Avila, E. & Cevallos, A. 2014. Pesquería del recurso merluza (Merluccius gayi) en el Ecuador Continental 2013. Ministerio de Agricultura, Ganadería, Acuacultura y Pesca, Manta, Ecuador.
  17. Gompertz, B. (1997). On the nature of the function expressive of the law of human mortality, and on a new mode of determining the value of life contingencies. In a letter to Francis Baily, Esq. F. R. S. &c. By Benjamin Gompertz, Esq. F. R. S. Abstracts of the Papers Printed in the Philosophical Transactions of the Royal Society of London, 2, 252-253
  18. Herrera, M.; Castro, R.; Coello Salazar, D.; Elias, E. & Saa, I. 2013. Puertos, caletas y asentamientos artesanales en la costa continental del Ecuador. Boletín especial del Instituto Nacional de Pesca 4(1), Ecuador.
  19. Isidro, E.J.L.F. 1996. Biology and population dynamics of selected demersal fish species of the Azores Archipelago. [PhD thesis, University of Liverpool, U.K.].
  20. Jakes-Cota, U.; Tripp-Valdez, A.; Arce-Acosta, M. & Omar López-Fuerte, F. 2020. Age and growth of stone scorpionfish (Scorpaena mystes) from the Gulf of California in Mexico. Fishery Bulletin 118(4): 324.
  21. Jarrin, J.R.M.; Andrade-Vera, S.; Reyes-Ojedis, C. & Salinas-de-León, P. 2018. Life History of the Mottled Scorpionfish, Pontinus clemensi, in the Galapagos Marine Reserve. Copeia 106(3): 515-523.
  22. Jiménez Prado, P. & Beárez, P. 2004. Peces marinos del Ecuador continental II. Quito/SIMBIIOE/2004, Quito, Ecuador.
  23. López, C.C.; Ochotorena, A.S.; Gómez, Y.R.; Martínez, R.L.; Valdéz, M.deL.S. & García, L.F.J. 2020. Morfología de las gónadas maduras del pez león (Pterois volitans: Pisces, Scorpaenidae) en el litoral oeste de La Habana. Revista de Investigaciones Marinas 40(2): 26-42.
  24. Marcinkevicius, M.S. 2020. Biología reproductiva y alimentación del escrófalo, Sebastes oculatus Valenciennes 1833 (Pisces, Sebastidae) en el área central del golfo San Jorge (Argentina). [PhD thesis, Universidad Nacional de La Plata, Argentina].
  25. Martín-Vivaldi, M. & Cabrero, J. 2003. Selección sexual. In: Soler, M. (Ed.), Evolución, la base de la biología. (Chapter 13, pp. 235-259). Proyecto Sur de Ediciones S.L., Granada, Spain.
  26. Mendoza-Nieto, K.; Soriguer-Escofet, M.C.; Carrera-Fernández, M.; Alió, J.J. & Figueroa-Chávez, F. 2022. Reproductive dynamics of Peprilus medius captured in the Ecuadorian Pacific. Latin American Journal of Aquatic Research 50(5): 660-668.
  27. Mesa, M.L.; Mesa, G.L. & Micalizzi, M. 2005. Edad y crecimiento del cabracho de Madeira, Scorpaena maderensis Valenciennes, 1833, en el Mediterráneo central. Fisheries Research 74(1): 265-272.
  28. Morales, M. & González, L.W. 2010. Edad y crecimiento del pez Haemulon steindachneri (Perciformis: Haemulidae) en el suroeste de la isla de Margarita, Venezuela. Revista de Biología Tropical 58(1): 299-310.
  29. Morales-Nin, B. 1992. Determination of growth in bony fishes from otolith microstructure. FAO Fisheries Technical Paper. No. 322. FAO, Rome.
  30. Moser, H.G. 1996. Scorpaeniformes. In: Moser, H.G. (Ed), The early stages of fishes in the California Current region. United States. National Marine Fisheries Service, California Cooperative Oceanic Fisheries Investigations, USA.
  31. Nieto Díaz, D.N. 2014. Descripción de la pesca con espinel de fondo en el puerto pesquero de Anconcito, provincia de Santa Elena. [Bachelor thesis, Universidad Estatal Península de Santa Elena, Ecuador].
  32. Oliva, J.N., Carbajal, J.W. & Tresierra, A. 1986. Biología reproductiva e histología de gónadas en peces. Univ. Nacional de Trujillo, Depto. Ciencias Biológicas, Sección de Recursos Acuáticos, Trujillo, Perú.
  33. Pauly, D.; Christensen, V.; Guénette, S.; Pitcher, T. J.; Sumaila, U.R.; Walters, C.J.; Watson, R. & Zeller, D. 2002. Towards sustainability in world fisheries. Nature 418(6898): 689-695.
  34. Poss, S.G. 1995. Scorpaenidae. Rascacios, chancharros. In: Fischer, W.; Krupp, F.; Schneider, W.; Sommer, C.; Carpenter K.E. & Niem, V. (eds.) Guía FAO para identificación de especies para lo fines de la pesca. Pacífico Centro-Oriental, 3: 1544-1564. FAO, Rome.
  35. Ramos-Santiago, E.; Ramírez-Gutiérrez, J.M.; Mendoza-Rodríguez, R. & Tapia-García, M. 2006. Reproducción, distribución y abundancia del pez Pseudupeneus grandisquamis (Perciformes: Mullidae), en el Golfo de Tehuantepec, México. Revista de Biología Tropical 54(4): 1103-1112.
  36. Richter, H. & McDermott, J.G. 1990. The staining of fish otoliths for age determination. Journal of Fish Biology 36(5): 773-779.
  37. Ricker, W.E. (1975). Computation and interpretation of biological statistics of fish populations. Bulletin of the Fisheries Research Board of Canada 191, 1-382.
  38. Ricker, W.E. (1979). Growth rates and models. In: Hoar, W.S.; Randall, D.J.; Brett, J.R. (eds.), Fish physiology. Academic Press, London. pp. 677–743.
  39. Rodríguez-Pulido, J.A.; Mira-López, T.M. & Cruz-Casallas, P.E. 2018. Determinación, diferenciación sexual y pubertad en peces. ORINOQUIA 22(1): 80-91.
  40. Ruiz-Ramírez, S.; Lucano-Ramírez, G.; González-Sansón, G.; Rojo-Vázquez, J.A. & Arellano-Martínez, M. 2012. Biología reproductiva de Anisotremus interruptus (Perciformes: Haemulidae) en el Pacífico central mexicano. Revista de Biología Tropical 60(2): 709-720.
  41. Smart, J.J. 2020. BayesGrowth: Estimate fish growth using MCMC analysis. R package version 0.3.0. The Comprehensive R Archive Network.
  42. Smart, J.J. & Grammer, G.L. 2021. Modernising fish and shark growth curves with Bayesian length-at-age models. PLOS ONE 16(2): e0246734.
  43. Vega Calderon, V. 2019. Estimación de la época reproductiva y longitud media de la primera madurez sexual del pejerrey argentino (Odontesthes bonariensis, Cuvier & Valenciennes 1835) en la zona norte del Lago Titicaca (2010—2017) [Bachelor thesis, Universidad Nacional de San Agustín de Arequipa, Perú].
  44. von Bertalanffy, L. 1938. A Quantitative Theory of Organic Growth (inquiries on Growth Laws. II). Human Biology 10(2): 181-213.
  45. Yee-Duarte, J.A.; Zúñiga-Flores, M.S.; Camacho-Mondragón, M.A. & García, J. 2018. Relación longitud-peso e índices morfofisiológicos del pez cochito Balistes polylepis (Steindachner, 1876) en el corredor San Cosme-Punta Coyote, Baja California Sur. In: proceedings of the IX Foro Científico de Pesca Ribereña, Sinaloa, Mexico.